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实验动物的采血方法

  1.小白鼠和大白鼠的采血方法
    (1) 剪(割)尾采血 用于需血量很少的情况。固定动物并露出鼠尾,
        将鼠尾置45℃温水中浸泡数分钟(或用二甲苯棉球涂擦),使尾部血管扩张,用棉求擦干后,剪(或用手术刀切)去尾尖0.5~1.0cm,让血液滴入盛器或直接以血红蛋白 吸管 吸取。大鼠可采血1.0ml左右。
    (2)眼底球后静脉丛取血 可用于需中等血量的场合。用左手捉鼠,拇指
       及中指抓住颈部皮肤,食指按在眼后,使眼球轻度突出,眼底球后静脉丛郁血。右手持配有磨钝的7号针头的1ml注射器(或内径0.6mm左右的硬质毛细玻管),沿内眦眼眶后壁向喉头方向刺入(深度小鼠为2~3mm,大鼠4         ~5mm),当感到有阻力时稍后退,边退边抽。采血完毕拔出针头。采血量:20~25g小鼠为0.2~0.3ml,200~300g大鼠0.5~1.0ml。
   (3)断头取血 需血量较大,而又无需保存动物生命时。左手以拇指和食指捉持动物的头颈部,使其头略向下倾,右手持剪刀猛力剪断鼠头,让血液滴入盛器。采血量:小鼠0.8~1.0ml,大鼠5~8ml。

  2.家兔采血方法
   (1)耳缘静脉采血 家兔置于固定箱内,剪(拔)去拟采血部位的毛,再用电灯照射加热或用二甲苯棉球涂擦,使耳部血管扩张。用粗针头刺破耳缘静脉或以刀片在血管上切一小口,让血自然流出,滴入盛器内(亦可用配有6            ~7号针头的注射器直接缓慢抽取)。采血完毕,用干棉球按压止血,或用木夹夹住10~20min。
   (2)心脏穿刺取血 家兔背位固定(或助手用左右手分别捉住兔的后肢和前肢,将兔右侧侧卧位于桌角),在左胸第2~4肋间剪毛一块,用碘酒和酒精消毒。然后用配有7号针头的10~20ml注射器,在心跳最明显处作穿刺。             针头刺入心腔,即有血液流入注射器(或边穿刺边抽)。采血完毕,迅速将针头拔出,使心肌上穿孔容易愈合。
   (3)股动脉采血 兔背位固定,助手拉直兔采血侧后肢,采血者摸准血管搏动显著处,右手持注射器,将针头垂直刺入股动脉(穿刺过深,可边抽边缓缓后退)。若已刺入动脉,即有鲜红色红色血液流入注射器。采血完毕,迅          速拔出针头,用干棉球压迫止血2~3min。
   (4)颈动脉采血 家兔麻醉(全麻,亦可用1%普鲁卡因2ml进行麻醉),背位固定,切口并剥离一侧颈动脉,结扎远心端,穿近心端取血(亦可插入塑料管放血)。如要动物存活,采血毕再结扎近心端动脉,缝合伤口,并用           消毒纱布覆盖,胶布固定;还要注意创口及器材的消毒。

  3.豚鼠的采血方法
   (1)耳缘静脉切割采血 以二甲苯棉球涂擦局部,使血管充血。用刀片割破耳缘血管,让血自然流出。此法可采血0.3ml左右。
   (2)心脏穿刺采血 方法基本同兔。因豚鼠较小,一般由助手握住前后肢即可。

  4.狗的采血法
     后肢外侧小隐静脉采血 局部剪毛,用碘酒和酒精棉球消毒,助
    手压迫静脉上端使之充血,采血者持配有7号或8号针头的注射器,穿刺入血管,即有血液流入注射器。采血毕,拔出针头,用干棉球压迫止血。
     前肢背侧皮下头静脉采血 采血方法基本同后肢外侧小隐静脉采
    血法。
    常用实验动物的最大安全采血量与最小致死采血量见表。一次采血过多或连续采血都可影响动物健康,造成贫血或导致死亡。

                                        表1 实验动物的采血量

动物种类

最大安全采血量( ml)

最大致死采血量( ml)

小白鼠

0.1

0.3

大白鼠

1

2

豚鼠

5

10

家兔

10

40

50

300

15

60



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