动物DNA提取实验
实验方法原理 在浓氯化钠（1-2 mol/L）溶液中，脱氧核糖核蛋白的溶解度很大，核糖核蛋白的溶解度很小，在稀氯化钠（0.14 mol/L）溶液中，脱氧核糖核蛋白的溶解度很小，核糖核蛋白的
原位杂交的基本方法
一、组织的取材 注意事项：刀要锋利、不能用力向下挤压组织； 组织块不宜过大、及时固定。 二、固定 （一）原则：及时固定、避免RNA酶的污染 4％多聚甲醛（0.1M PBS PH7.4，可加1/10
凝胶迁移实验（EMSA）实验2
四、Super-Shift EMSA 非纯化的蛋白样本和一个特定的探针可形成一个或几个特异的蛋白复合物。确定复合物中蛋白的特征可能会困难，可以加入目的蛋白的抗体，进行超迁移实验，即Supe
FISH和PRINS技术3
二、用引物介导的原位标记（PRINS） 是PCR和荧光原位杂交（FISH）的结合， PRINS是由未标记的序列特异性寡核苷酸探针与固定在细胞内的靶DNA互补序列，在聚合酶的驱动下，带有标记的脱
DNA原位核酸杂交方法2
二、生物素标记DNA探针在石蜡切片上的检测方法。 （1）固定：组织以10%中性福尔马林液，常规石蜡包埋，切片厚4-6 μm，最好用硅化玻，60℃烤片6-8 h。 （2）脱蜡至酒精，空气中干燥。
DNA原位核酸杂交方法
一、地高辛（Dig）标记DNA探针在石蜡切片上的检测方法 1. 组织切片的预处理 （1）固定：组织以10%中性福尔马林液，常规石蜡包埋，切片厚4-6 μm，最好用硅化玻，60℃烤片6-8 h。 （2）脱
乙醇沉淀DNA实验操作方法
1. 加入 1/10 体积的乙酸钠（3 mol/L ，PH=5.2）于 DNA 溶液中充分混匀，使其 最终浓度为 0.3 mol/L； 2. 加入 2 倍体积用冰预冷的乙醇混合后再次充分混匀置于- 20℃中 15~30 分钟； 3. 12,000 g 离心
基因芯片技术4
(2) 激光扫描共焦显微镜 激光扫描共焦显微镜与激光扫描荧光显微镜结构非常相似，但是由于采用了共焦技术因而更具优越性。这种方法可以在荧光标记分子与 DNA 芯片杂交的同时进行杂
基因芯片技术3
（1） 激光扫描荧光显微镜 探测装置比较典型。方法是将杂交后的芯片经处理后固定在计算机控制的二维传动平台上，并将一物镜置于其上方，由氩离子激光器产生激发光经滤波后通过
质粒的制备、提取
启动子质粒 二、 菌落制备主要环节 （二） 双酶切 将 PCR 回收产物和 pGL3-Basic 空载体同时进行双酶切。 1. 双酶切体系 （1） DNA 回收片段酶切的试剂和剂量如下： Xho Ⅰ 1ul Hind Ⅲ 1uL D
